FAQ

Les échantillons de selles et de sang doivent être traités, dans la mesure du possible, dans les 60 minutes. Un stockage intermédiaire, par réfrigération ou congélation selon la matrice de l'échantillon, est possible. Voir à ce sujet : Conservation et manipulation

Les lignes bleu clair sont importantes pour le contrôle qualité interne et peuvent également servir de lignes de repère à l'utilisateur (endroit où elles apparaissent). Elles disparaissent lors du lavage effectué pendant le test, sans avoir d'incidence sur celui-ci. Le test est valable.

Oui, même une ligne T peu marquée est considérée comme un résultat positif. L'intensité de la ligne de contrôle (C) n'est pas liée à celle de la ligne de test.

En cas de suspicion d'exposition à une température hors de la plage 2-30 °C : vérifier à l'aide d'un échantillon de contrôle (si disponible) ou d'un tampon de migration. Ne pas utiliser en cas d'absence de la ligne C ou de comportement de migration atypique.

Seule la pointe du coton-tige doit être recouverte d'une fine couche de selles. Pour ce faire, homogénéisez l'échantillon de selles (à l'aide d'une spatule en bois, par exemple) et tamponnez-en la surface à au moins trois endroits avec la pointe du coton-tige. Une quantité excessive de selles peut bloquer le test ou donner à la zone de fond une teinte jaunâtre à brunâtre.

5 minutes maximum. Mieux encore : bien mélanger la tête du coton-tige imprégnée de selles dans le tampon, puis appliquer la solution fraîche directement sur le test.

Oui, c'est tout à fait possible, surtout lorsque les selles sont friables, et cela facilite grandement la tâche. La matière adhère ainsi mieux au coton-tige et s'applique plus facilement.

• Conserver les selles au réfrigérateur (4–8 °C) pendant 3 jours maximum ; pour un stockage intermédiaire plus long, les congeler
• Le sérum/plasma reste stable au frais jusqu’à 48 h ; pour un stockage intermédiaire plus long, le congeler
• Le sang total est stable jusqu’à 48 h uniquement au frais ; la congélation n’est pas possible

• Une température inférieure à 2 °C ou supérieure à 30 °C peut nuire aux performances du test et à l'effet tampon.
• Les amener à température ambiante avant de commencer le test. Des tests trop froids peuvent entraîner l'apparition de lignes faibles ou retardées.

Une fois le flacon ouvert et le mélange effectué, utiliser dans les 30 minutes. Un liquide tampon périmé peut fausser les résultats du test.

Si les échantillons doivent être transportés, les conserver au frais afin de préserver la stabilité de l'antigène.

Pour éviter un débordement de sang total ou un blocage du test, attendez que le sang soit entièrement aspiré avant d'ajouter le tampon de coulée. C'est notamment dans le cas d'un sang très épais ou visqueux qu'un ajout prématuré peut perturber le test.

Son utilisation peut entraîner une coloration de fond, ce qui peut compliquer l'interprétation et fausser les résultats. Les échantillons lipémiques peuvent influencer les résultats du test, car la graisse peut bloquer le couplage Ag/AK, ce qui peut entraîner des résultats faussement négatifs.

La litière traitée chimiquement présente dans le mélange échantillon-tampon peut fausser le résultat du test ; il convient donc d'éviter de prélever des échantillons dans des zones contaminées. Mieux vaut fendre l'échantillon de selles en deux et prélever l'échantillon dans la partie centrale.

Causes possibles : échantillon trop visqueux, quantité trop importante, présence de mucus ou d'impuretés.

Solution :

• Échantillon de selles : tamponner la pointe du coton-tige uniquement en surface ; si nécessaire, ajouter quelques gouttes de tampon limpide.
• Sérum : ne pas analyser d'échantillons hémolytiques, lipémiques ou ictériques.
• Échantillons de sang total : laisser le temps au sang de s'imprégner complètement dans la zone de prélèvement avant d'ajouter le tampon. (Des retards peuvent survenir en cas de sang visqueux).

Indique une quantité excessive de matières fécales. Diluer ou utiliser moins de produit pour permettre un écoulement propre et éviter l'apparition de traces brunes. Il est également possible de retourner le flacon tampon, de laisser les composants lourds se déposer au fond et de jeter la première goutte.

Le test n'est pas valide, veuillez le refaire. Vérifiez si l'échantillon présente des anomalies ou si vous constatez des anomalies pendant le déroulement du test.

Lire les résultats exactement dans le délai indiqué. Une lecture tardive entraîne souvent l'apparition de lignes d'ombre non spécifiques (artefacts d'évaporation !).

• Seules les lignes qui apparaissent ET persistent pendant la fenêtre de 10 minutes sont valides.
• Les lignes qui disparaissent avant l'expiration du délai ou qui n'apparaissent qu'après 10 minutes ne doivent pas être prises en compte.

• Le mélange échantillon-tampon est trop visqueux, ce qui rend difficile l'obtention d'un résultat net. Il convient donc de
  • Solution : ne pas plonger complètement la pointe du coton-tige dans les selles, mais tamponner superficiellement plusieurs endroits afin que seule la pointe soit recouverte.
• Moment de prélèvement inapproprié : l'échantillon a été prélevé à un moment où la maladie n'est pas encore ou n'est plus détectable, par exemple le FeLV (antigènes détectables seulement 2 à 4 semaines après l'infection) ou le CPV/FPV (période d'excrétion très courte, environ 3 à 10 jours)
• Test effectué immédiatement après un traitement : par exemple, les giardia mortes continuent d’être excrétées par l’animal pendant environ 3 semaines après un traitement. Les tests rapides ne font pas la distinction entre les giardia vivantes et mortes.
• Les vaccins vivants, comme ceux contre le parvovirus, peuvent encore être détectés par le test antigénique jusqu'à 3 semaines plus tard.

• Moment inapproprié pour le test : le délai de formation des anticorps après une infection peut varier en fonction de l'agent pathogène (cf. maladies des voyageurs)
• Selon le vaccin (en particulier pour les vaccins vivants), ne pas effectuer le test immédiatement ! La séroconversion prend du temps (généralement 3 à 4 semaines après la dernière dose).

• Sensibilité : capacité à identifier correctement les animaux malades comme positifs.
• Spécificité : capacité à identifier correctement les animaux sains comme négatifs.
• TTP : fiabilité globale du test, tenant compte de la sensibilité et de la spécificité.

• Fèces + urine ou autres substances → réactions inattendues, test perturbé.

• Lipémique, hémolytique ou ictérique : peut accentuer la coloration de fond et/ou perturber l'écoulement, ce qui rend l'interprétation plus difficile.
• Selles friables ou très friables : humidifier le tampon pour prélever la matière à l'aide d'un coton-tige.

Litière pour chat, particules de litière ou restes de nourriture → résultat faussé. Utiliser systématiquement des échantillons de selles propres.

• Certains animaux (Giardia, parvovirus, FeLV) peuvent excréter des antigènes ou des anticorps pendant une période prolongée ou de manière intermittente.
• L'interprétation peut nécessiter, le cas échéant, plusieurs tests effectués à intervalles réguliers.

• Après l'administration d'un vaccin vivant, le test antigénique peut donner un résultat temporairement positif.
• Délai d'attente après une vaccination par un vaccin vivant : tests antigéniques (par ex. parvovirus) : au moins 2 à 3 semaines ; tests sérologiques : environ 2 à 4 semaines, selon le vaccin.

• Cryptosporidies ou Giardia → L'homme peut également être infecté. Respecter les règles d'hygiène.

• Il arrive souvent que les micropores de la membrane en nitrocellulose soient obstrués ou qu'une quantité excessive de matières fécales ait été déposée sur la zone d'échantillonnage. Remarque : certains tampons d'échantillonnage sont plus épais et ont plus de mal à filtrer les échantillons visqueux ou les quantités excessives de matière.

• Pour les échantillons de selles, il est recommandé d'homogénéiser brièvement l'échantillon avant de le prélever (par exemple à l'aide d'une spatule en bois)
• Avantage : cela augmente la probabilité de détecter effectivement les antigènes présents dans l'échantillon.

• Une quantité excessive de mélange selles/tampon peut fausser la ligne de test et/ou entraver le déroulement du test ; une quantité insuffisante peut entraîner des résultats faussement négatifs.
• Conseil : humidifiez toujours l'extrémité du coton-tige, ne l'immergez pas entièrement.

• En cas de diarrhée très liquide, le virus ou l'antigène peut être éliminé → le test est d'abord négatif, bien qu'il y ait infection.
• Solution : après une diarrhée liquide, attendre 30 minutes et utiliser des selles plus solides (→ effet de dilution).

• Utiliser des gants, veiller à la propreté des récipients contenant les échantillons.
• Une contamination croisée (par exemple entre animaux) peut entraîner des résultats faussement positifs.

• Les lignes T faibles, mais visibles pendant la période d'interprétation, sont considérées comme positives. En cas de ligne faible et d'absence de suspicion clinique : envisager de répéter le test et/ou de recourir à un examen de confirmation (par exemple, PCR, Western blot).
• L'intensité de la ligne de contrôle n'a aucune influence ni aucune importance pour la ligne de test.

• En cas de suspicion d'infection chronique ou récidivante, il peut être judicieux, par mesure de précaution, de réaliser des tests de dépistage d'agents pathogènes différentiels (par exemple : Giardia et CPE ou Giardia et Cryptosporidium).
• Exemple : Giardia ou parvovirus – un test individuel négatif ne signifie pas nécessairement « absence d'agent pathogène ».

• De nombreux tests antigène/anticorps ont des fenêtres temporelles spécifiques pendant lesquelles l'infection est détectable.
  
  • Par exemple, l'antigène du parvovirus : période d'environ 7 à 10 jours, excrétion du virus 3 à 4 jours après l'infection et avant l'apparition des symptômes
  • Exemple : antigène du virus de la maladie de Carré : détectable dans le sang pendant 3 à 4 jours, puis dans les selles pendant environ 3 jours après
• Tests effectués trop tôt → résultats faussement négatifs.
• Tests effectués trop tard (par exemple après l'excrétion du virus) → également des résultats faussement négatifs.

• Particulièrement utile après un traitement ou une vaccination pour suivre l'évolution.
• Mais attention : les vaccins à virus vivants peuvent être détectés par les tests rapides (par exemple, l'antigène du parvovirus après vaccination). Respectez le délai d'attente !